表14-3-14 蛋白酶抑制剂对纯化肌动蛋白轻链激酶活力的影响 | ||
纯化表格 | 加入的试剂混合物 | 相对活力 |
负型抑制剂 | 没有 | 50 |
负型抑制剂 | Ca2+ | 50 |
负型抑制剂 | 钙调素 | 50 |
负型抑制剂 | Ca2+/钙调素 | 50 |
正型抑制剂 | 没有 | 1 |
正型抑制剂 | Ca2+ | 1 |
正型抑制剂 | 钙调素 | 1 |
正型抑制剂 | Ca2+/钙调素 | 100 |
通过凝胶过滤和离子交换层析部分地纯化激酶,接着在Ca2+存在下通过钙调素亲和柱。使人高兴的是,所有有活性的激酶均粘在柱子上,并且当用Ca2+螯合剂EDTA洗脱时能定量地洗脱下来。根据表14-3-14所示,纯化酶现在像所希望的那样,这表明了酶绝对依赖于Ca2+/钙调素。在此基础上,你可直接通过钙调素亲和柱挽救最初纯化的酶样品。令人惊奇的是激酶直接通过柱子,不论Ca2+存在与否。
由MNNG(亚硝基胍)引起的诱变损伤的本质以及它从DNA上被修复的机制可以用下面的实验来鉴定。为了确定诱变损伤的本质,未经处理的细菌和已用低剂量MNNG处理的细菌都在含50μg/ml的3H-MNNG的培养物中培养10min。分离它们的DNA并水解成核苷酸,然后经过纸层析分析放射性的嘌呤,结果如图Q12.2所示:
图Q12.2 层析法分离未被处理和已被低剂量MNNG处理的细菌DNA中被标记的甲基化嘌呤实线表示未被处理细菌DNA中的甲基化嘌呤;虚线表示MNNG处理的细菌所得结果
为了研究诱变损伤切除的机制,首先纯化负责切除的酶,把不同量的酶(相对分子质量19000)和已被3H标记含0.26pmol突变碱基的DNA一起温育,分析切除动力学。在不同时间取样,分析DNA以确定还存在多少突变残基(图Q12.3)。当在5℃而不是37℃时重复这个实验时,虽然最初的切除速率较慢,却得到一样的终点。
图Q12.3纯化的甲基转移酶把3H标记的甲基从DNA上切除所示为纯化酶的量